猪链球菌的分离与鉴定
日期:2018年01月15日
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论文编号:lw200708211321585888
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所属栏目:医药学论文
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论文语种:中文
论文用途:职称论文 Thesis for Title
猪链球菌的分离与鉴定
发布时间: 2003-2-2 作者:朱凤才 杨华富 胡晓杼 汪华 王广和 宋亚军 杨瑞馥
2000年4月,陕西省岐山县种猪繁育场仔猪流行关节炎和败血症。无菌采取患关节炎猪的关节液和患败血症猪的肝、肺、脾及肠系膜淋巴结各8份病料,并对这16份病料进行病原菌分离试验、血清学鉴定、致病力试验、保护力试验、细菌回收试验、药敏试验。结果表明:该病原菌为2型猪链球菌,引起关节炎的猪链球菌较引起败血症的猪链球菌致病力弱;该菌对头孢菌素、青霉素高度敏感。
关键词:猪链球菌 分离与鉴定
论文完成日期:2000年6月15日
目 录
摘要………………………………………………1
前言………………………………………………2
1. 试验材料……………………………………….2
2. 方法…………………………………………….2
2.1病原分离……………………………………..2
2.2分离菌株的鉴定……………………………..2
2.3致病力及保护力试验………………………..3
2.4药敏试验……………………………………..3
3.结果…………………………………………….4
3. 1分离菌的培养特性及形态特征….………….4
3.2生化试验结果………………………………..5
3.3血清学鉴定结果……………………………..5
3.4致病力试验及保护力试验结果……………..5
3.5细菌回收试验结果…………………………..5
3.6药敏试验结果………………………………..5
4分析与讨论…………………………………….6
参考文献…………………………………………7
猪链球菌的分离与鉴定
摘 要
2000年4月,陕西省岐山县种猪繁育场仔猪流行关节炎和败血症。无菌采取患关节炎猪的关节液和患败血症猪的肝、肺、脾及肠系膜淋巴结各8份病料,并对这16份病料进行病原菌分离试验、血清学鉴定、致病力试验、保护力试验、细菌回收试验、药敏试验。结果表明:该病原菌为2型猪链球菌,引起关节炎的猪链球菌较引起败血症的猪链球菌致病力弱;该菌对头孢菌素、青霉素高度敏感。
关键词:猪链球菌 分离鉴定
前 言
猪链球菌(Streptococcosis suis)是猪的一种重要疾病,养猪业发达国家如美、英、荷及爱尔兰等常有本病发生。我国于1958年就有猪链球菌病的报道,1976年我国南方几省曾一度广泛流行,给我国养猪业带来了很大危害。
猪链球菌截止到目前已发现的荚膜型已超过30种[1]。我国于1995年首例鉴定证实2型猪链球菌在我国的存在 [2]。猪链球菌可致2—6周龄仔猪败血症、脑膜炎、关节炎及支气管肺炎等[3-7]。病猪和带菌猪是本病的重要传染源,病猪的鼻液、尿液、血液、肌肉、内脏和关节内均可检出病原体。未经无害处理的病死猪肉、内脏及废弃物是散播本病的重要原因,呼吸道是本病的主要传播途径。本病一年四季均可发生,但以4—10月份发生较多。本病常为地方性流行性,多呈败血性。短期波及全群,如不进行防治,则发病率、病死率很高,慢性常为地方性散发性传染。
2000年4月,岐山县种猪繁育场仔猪流行关节炎及败血症,多为2—6周龄仔猪。无菌采取关节炎病猪的关节液及败血症病猪的肝、脾、肺及肠系膜淋巴结,经实验室分离鉴定,证实为2型猪链球菌。现将分离鉴定结果报告如下。
1. 实验材料
1. 1病料 无菌采取岐山县种猪繁育场患关节炎病猪的关节液8份,编号为1—8号,无菌采取患败血症猪的肝、肺、脾及肠系膜淋巴结8份,编号为9—16号。
1. 2试剂 试验所用的各种糖均购自上海化学试剂二厂,批号自95—98年不等。
1. 3培养基 绵羊鲜血平板、匹克氏增菌液、10ml/L猪血清肉汤及各种糖培养基按常规方法制备[8]。
1. 4血清学试验 猪链球菌诊断血清与平板凝集抗原均购自中国兽药鉴察所,批号为990705。
1. 5药敏纸片 购自浙江省军区后勤部,批号20000312。
1. 6试验动物 健康小白鼠(30—35g)50只,购自第四军医大学实验动物中心。
2. 方法
2. 1 病原分离
将所采病料分别涂片,革兰氏染色镜检,然后,分别接种鲜血琼脂平板。37℃需氧培养24h后,挑取可疑菌落接种于匹克氏增菌液,37℃培养24h后,革兰氏染色,显微镜检查,再接种血清肉汤,纯化后放置4℃,冷藏备用。
2.2 分离菌株的鉴定
2.2.1生化试验
随机抽取上述分离菌血清肉汤培养物3#、8#、13#、15#,分别接种于蔗糖、山梨醇、棉实糖、葡萄糖、甘露糖、蕈糖、乳糖、菊糖、水杨苷、马尿酸钠培养基,37℃培养24h后,观察其对糖的利用情况。
2.2.2血清学鉴定
将3#、8#、13#、15#菌经缓冲肉汤培养8h,通过3000r/min离心10min,PBS洗涤2次,用Ph7.2 的0.01mol/L PBS制成 1*10 10~2*10 10细菌悬液。取1滴上述细菌悬液与适当的抗血清在洁净玻片上混匀,立即观察凝集现象。同时,设立细菌悬液对照及血清对照。
2.3 致病力及保护力试验
2.3.1菌落形成单位的测定 按常规方法进行[9]
2.3.2致病力试验
无菌吸取上述血清肉汤培养物 (含菌量5.0*10 8CFU/ml)以0.1ml /只、0.2ml/只、 0.3ml/只、 0.4ml /只、0.5ml/只分别腹腔注射小白鼠2只,观察其死亡时间和数量,测定其最小致死量。再将上述血清肉汤培养物腹腔注射小白鼠,小白鼠共14只,分7 组。第一组,每只小白鼠注射3#菌0.2ml,第二组每只注射8#菌0.2ml,第三组每只注射3#、8#菌各0.1ml,第四组每只注射13#菌0.2ml,第五组每只注射15#菌0.2ml,第六组每只注射13#、15#菌各0.1ml,第七组每只注射无菌血清肉汤1.0ml。以上各组分别饲养观察其死亡时间及数量。
2.3.3保护力试验
将3#、8#、13#、15#血清肉汤培养物分别接种于18 cm鲜血平板。37℃培养24h后,收菌,用麦氏比浊管比浊,适当稀释,然后用0.3%甲醛灭活;37℃作用24h;作无菌检验。然后分别腹部皮下接种小白鼠2只,0.4ml/ 只。10天后,再分别人工感染,0.2ml/只。
2.3.4细菌回收试验
对致病力试验出现症状及死亡小白鼠剖检,并采集病料,进行分离。
2.4药敏试验
采用纸片扩散法,用无菌棉签蘸取分离菌的血清肉汤培养物,均匀涂布于9cm鲜血平板;待稍干后,用无菌镊子将各种药敏纸片分别平贴在培养基表面,4℃2h使药物扩散,然后置37℃培养20—24h,观察结果。结果按抑菌圈直径大小和各抗菌药的具体标准,评定为高度敏感、中度敏感或耐药。结果评定参照表1。
表 1 各种抗菌药物的抑菌圈与敏感标准
抗菌药物名称
抑菌圈直径(mm)
耐药
中度敏感
高度敏感
青霉素
土霉素
洁霉素
链霉素
庆大霉素
卡那霉素
头孢菌素<10
<10
<10
<10
<12
<12
<10
10~12
10~14
10~14
10~14
13~14
13~14
10~15
>13
>15
>15
>15
>15
>15
>15
3.结果
3.1分离细菌的培养特性及形态特征
3.1.1培养特性
37℃培养24h后,所采的12份病料在鲜血琼脂平板上形成表面光滑、隆起的灰绿色小菌落,外层有明显的β溶血环。该菌在匹克氏增菌液中底部有沉淀,在血清肉汤中先均匀浑浊,后在试管底部形成沉淀,上部澄清,不形成菌膜。
3.1.2染色特性
关节液、鲜血琼脂、匹克氏增菌液及血清肉汤培养物涂片、革兰氏染色、显微镜检查为革兰氏阳性,在关节液、鲜血琼脂培养物中多呈单个、双球或短链状排列,在匹克氏增菌液及血清肉汤培养物中多呈长链状。
3.2生化试验结果(见表2)
表2 分离菌生化试验结果
鉴定 蔗糖 山梨 棉实 葡萄 甘露 蕈糖 乳糖 菊糖 水杨 马尿
项目 醇 糖 糖 糖 苷 酸钠
3# + - - + + + + + + -
8# + - - + + + + + + -
13# + - - + + + + + + -
15# + - - + + + + + + -
判定标准:“+”表示大多数(90%—100%)菌株为阳性;“-”表示大多数(90%—100%)菌株为阴性。
表2表明分离的3#、8#、13#、15#菌的生化反应10>